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    羊水細胞培養基的制備方式

    更新時間:2014-09-22 點擊次數:2483
    一、羊水細胞培養基常規培養法
     
    1、采樣:選擇妊娠13-14周婦女,在無菌條件下抽取羊水5ml,立即注入無菌離心管中。
    2、收集:離心分離細胞,1000rpm10分鐘,去上清,留0.5ml,輕打混勻。
    3、接種:將混勻的羊水細胞種置于50ml或100ml細胞培養瓶內,平均10ml羊水細胞收集的細胞種置一瓶加5-10ml混合培養液。
    4、培養:酒精燈火先封口,靜置培養48小時后觀察細胞貼臂及生長情況,5-10天后可見瓶底面有大量羊水細胞生長。
    5、終止培養:當有大量圓形發亮細胞出現時,加秋水仙素0.02-0.04ug/ml,作用10-12小時。
    6、細胞收集:將培養液倒入一干凈離心管中,加0.025%的胰蛋白酶0.5-1ml/瓶,輕輕搖動,使培養瓶底面*接觸消化酶,然后用彎頭吸管吹打,待細胞全部脫落后加前培養液終止胰蛋白酶消化。用吸管移細胞懸液于離心管中。1000-2000rpm10分鐘,棄上清,留細胞沉慮。若一次消化不*,可反復消化。
    7、低滲及預固定:加預溫37℃KCL溶液10ml,37℃溫育30分鐘,加0.5-1ml新鮮配制的3∶1甲醇冰乙酸固定液預固定,用氣泡吹打細胞使其混勻。
    8、固定:用新鮮配制的3∶2甲冰固定三次,每次30分鐘。固定液加入時沿管壁緩慢加入。
    9、制片及干燥:用絨毛制片。
    10、分帶處理。
     
    二、羊水細胞培養基蓋玻片培養法
     
    1、采樣:選擇妊娠13-14周婦女,在無菌條件下抽取羊水5ml,立即注入無菌離心管中。
    2、收集:離心分離細胞,1000rpm10分鐘,去上清,留0.5ml,輕打混勻。
    3、接種:30mm培養皿中放蓋玻片1張,每片滴混勻的細胞液1-2滴,置培養箱內培養30-60分鐘。
    4、培養:取出后從蓋玻片外加培養液2ml,靜置培養48小時后觀察細胞生殖狀況并定時換液,5-10天后,可見大量成纖維細胞或上皮樣細胞生長。
    5、終止培養:當有大量圓形發亮細胞出現時,加秋水仙素0.02-0.04ug/ml,作用10-12小時。
    6、低滲:倒掉培養液,加預溫37℃0.075MKCL溶液5ml,37℃溫育30分鐘,鏡下可見脹大的羊水細胞,加0.5-1ml 3∶1甲醇:冰醋酸固定液預固定。
    7、固定:倒掉低滲液,加5ml固定液固定30分鐘以上,反復3次。
    8、干燥:將附有細胞的蓋玻片斜放于培養皿中,置80℃烤箱處理2-3小時。
    9、膠片:將附有細胞的蓋玻片用樹脂膠封固于玻片上,正面朝外,小心細胞破壞。
     

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